Przejdź do treści

Achromobacter xylosoxidans

Wartości graniczne na podstawie dokumentu Tabele interpretacji wyników oznaczania lekowrażliwości zgodnie z zaleceniami EUCAST 2026, wersja 16.0, obowiązuje od 2026-01-01.

Pełna macierz lekowrażliwości

Wartości graniczne

Różne leki

Trimetoprim-sulfametoksazol

Krążek
1,25-23,75 µg
MIC wrażliwy
≤ 0,125 mg/L
MIC oporny
> 0,125 mg/L
Strefa wrażliwy
≥ 26 mmW strefie zahamowania może wystąpić wzrost. Gęstość wzrostu może wahać się od drobnej mgiełki do dobrze widocznego wzrostu (patrz zdjęcia poniżej). Jeśli widać jakąkolwiek krawędź strefy, należy zignorować wzrost w strefie zahamowania i odczytać średnicę strefy. iwości na trimetoprim – sulfametoksazol. wania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi. rny.
Strefa oporny
< 26 mmW strefie zahamowania może wystąpić wzrost. Gęstość wzrostu może wahać się od drobnej mgiełki do dobrze widocznego wzrostu (patrz zdjęcia poniżej). Jeśli widać jakąkolwiek krawędź strefy, należy zignorować wzrost w strefie zahamowania i odczytać średnicę strefy. iwości na trimetoprim – sulfametoksazol. wania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi. rny.

1Trimetoprim: sulfametoksazol w stosunku 1:19. Wartości graniczne wyrażono jako stężenie trimetoprimu.

Dawka standardowa: trimetoprimu 0,16 g + sulfametoksazolu 0,8 g co 12 godz. doustnie · trimetoprimu 0,16 g + sulfametoksazolu 0,8 g co 12 godz. dożylnie

Dawka wysoka: trimetoprimu 0,24 g + sulfametoksazolu 1,2 g co 12 godz. doustnie · trimetoprimu 0,24 g + sulfametoksazolu 1,2 g co 12 godz. bez wskazanej drogi

Niepowikłane ZUM: trimetoprimu 0,16 g + sulfametoksazolu 0,8 g co 12 godz. doustnie

Zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych: (5 mg/kg, max 0,48 g trimetoprimu + 25 mg/kg, max 2,4 g sulfametoksazolu) co 8 godz. iv

Karbapenemy

Meropenem

Krążek
10 µg
MIC wrażliwy
≤ 1 mg/L
MIC oporny
> 4 mg/L
Strefa wrażliwy
≥ 26 mm
Strefa oporny
< 20 mm

Dawka standardowa: 1 g co 8 godz. dożylnie w ciągu 30 min.

Dawka wysoka: 2 g co 8 godz. dożylnie w ciągu 3 godz.

Zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych: 2 g co 8 godz. iv w ciągu 30 min. (lub w ciągu 3 godz.)

Penicyliny

Piperacylina-tazobaktam

Krążek
30-6 µg
MIC wrażliwy
≤ 4 mg/LDla celów oznaczania lekowrażliwości ustalono stężenie tazobaktamu na 4 mg/L.
MIC oporny
> 4 mg/LDla celów oznaczania lekowrażliwości ustalono stężenie tazobaktamu na 4 mg/L.
Strefa wrażliwy
≥ 26 mm
Strefa oporny
< 26 mm

Dawka standardowa: (4 g piperacyliny + 0,5 g tazobaktamu) co 6 godz. iv (30-minutowe wlewy) lub co 8 godz. (przedłużone 4-godzinne wlewy)

Dawka wysoka: piperacyliny 4 g + tazobaktamu 0,5 g co 6 godz. dożylnie przedłużone 3 - godzinne wlewy

Uwaga: Niższa dawka (4 g piperacyliny + 0,5 g tazobaktamu) co 8 godz. iv (30-minutowe wlewy) jest odpowiednia w niektórych zakażeniach, takich jak powikłane ZUM, zakażenia wewnątrzbrzuszne i zakażenia stopy cukrzycowej, ale nie w przypadku zakażeń wywołanych przez izolaty oporne na cefalosporyny trzeciej generacji.

Cefalosporyny

Cefiderokol

Krążek
30 µg
MIC i strefa
Aktywność in vitro cefiderocolu wobec Achromobacter xylosoxidans jest porównywalna do aktywności tego leku wobec Enterobacterales oraz istnieją dowody pochodzące z modeli zwierzęcych sugerujące skuteczność tego leku. Jednakże nie ma wystarczających danych klinicznych, aby określić kliniczną wartość graniczną. Izolaty o MIC ≤0,5 mg/L (średnica strefy zahamowania wzrostu ≥26 mm) są w większości pozbawione mechanizmów oporności i można wdrożyć leczenie. Izolaty o MIC 1-2 mg/L posiadają nabyte mechanizmy oporności. Istnieje niewiele danych klinicznych dotyczących wyników leczenia tych izolatów, jednak mogą być zastosowane jeśli nie ma innych opcji terapeutycznych. Izolaty o MIC >2 mg/L (średnica strefy zahamowania wzrostu <22 mm) prawdopodobnie będą oporne.

1Oznaczenie MIC metodą mikrorozcieńczeń należy przeprowadzić z użyciem zubożonego w żelazo bulionu Mueller-Hinton oraz należy przestrzegać określonych instrukcji odczytu. Opis warunków testowania i instrukcję odczytu można znaleźć pod adresem https://www.eucast.org/eucastguidancedocuments.

Dawka standardowa: 2 g co 8 godz. dożylnie w ciągu 3 godz.

Dawka wysoka: Brak

Metodyka oznaczania

Oznaczanie MIC

Oznaczanie wartości MIC (metodą mikrorozcieńczeń w bulionie zgodnie z normą ISO 20776-1)

Podłoże
Mueller-Hinton bulion z dodatkiem kationów
Inokulum
5x10^5 CFU/mL
Hodowla
zakryte płytki, warunki tlenowe, 35±1 ºC, 18±2 godz.
Odczyt
jeśli nie zaznaczono inaczej, wartości MIC należy odczytywać jako najniższe stężenie leku, które całkowicie hamuje widoczny wzrost drobnoustroju. Więcej informacji w dokumencie: „EUCAST reading guide for broth microdilution” (https://www.eucast.org/ast_of_bacteria/mic_determination).
Kontrola jakości
Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853. Do kontroli antybiotyków, których ten szczep nie obejmuje oraz kontroli inhibitora w połączeniach β-laktam-inhibitor, patrz Tabele Kontroli Jakości EUCAST.

Metoda dyfuzyjno-krążkowa

Metoda dyfuzyjno-krążkowa zgodnie z EUCAST

Podłoże
Mueller-Hinton agar
Inokulum
zawiesina o gęstości 0,5 McFarlanda
Hodowla
warunki tlenowe, 35±1 ºC, 18±2
Odczyt
jeśli nie zaznaczono inaczej, od spodu płytki, na czarnym tle, w świetle odbitym; odczytywać wielkość strefy całkowitego zahamowania wzrostu bakterii. Więcej informacji w dokumencie: „EUCAST reading guide for disk diffusion” (https://www.eucast.org/ast_of_bacteria/disk_diffusion_methodology/) oraz „Oznaczenie lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową” (https://korld.nil.gov.pl/rekomendacje/rekomendacje-eucast/).
Kontrola jakości
Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853. Do kontroli krążków, których ten szczep nie obejmuje oraz kontroli inhibitora dla krążków z połączeniami β-laktam-inhibitor, patrz Tabele Kontroli Jakości EUCAST.

Ilustracje ze źródła (3)

Przykłady wyglądu stref zahamowania wzrostu dla Achromobacter xylosoxidans przy oznaczaniu wrażliwości na trimetoprim – sulfametoksazol.
a-b) Widoczna jest zewnętrzna krawędź strefy zahamowania wzrostu. Należy odczytać wielkość strefy zahamowania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi.
c) Podrost pod krążek oraz brak widocznej krawędzi strefy zahamowania wzrostu. Szczep raportować jako oporny.
Achromobacter xylosoxidans — Przykłady wyglądu stref zahamowania wzrostu dla Achromobacter xylosoxidans przy oznaczaniu wrażliwości na trimetoprim – sulfametoksazol. a-b) Widoczna jest zewnętrzna krawędź strefy zahamowania wzrostu. Należy odczytać wielkość strefy zahamowania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi. c) Podrost pod krążek oraz brak widocznej krawędzi strefy zahamowania wzrostu. Szczep raportować jako oporny.
Przykłady wyglądu stref zahamowania wzrostu dla Achromobacter xylosoxidans przy oznaczaniu wrażliwości na trimetoprim – sulfametoksazol.
a-b) Widoczna jest zewnętrzna krawędź strefy zahamowania wzrostu. Należy odczytać wielkość strefy zahamowania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi.
c) Podrost pod krążek oraz brak widocznej krawędzi strefy zahamowania wzrostu. Szczep raportować jako oporny.
Achromobacter xylosoxidans — Przykłady wyglądu stref zahamowania wzrostu dla Achromobacter xylosoxidans przy oznaczaniu wrażliwości na trimetoprim – sulfametoksazol. a-b) Widoczna jest zewnętrzna krawędź strefy zahamowania wzrostu. Należy odczytać wielkość strefy zahamowania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi. c) Podrost pod krążek oraz brak widocznej krawędzi strefy zahamowania wzrostu. Szczep raportować jako oporny.
Przykłady wyglądu stref zahamowania wzrostu dla Achromobacter xylosoxidans przy oznaczaniu wrażliwości na trimetoprim – sulfametoksazol.
a-b) Widoczna jest zewnętrzna krawędź strefy zahamowania wzrostu. Należy odczytać wielkość strefy zahamowania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi.
c) Podrost pod krążek oraz brak widocznej krawędzi strefy zahamowania wzrostu. Szczep raportować jako oporny.
Achromobacter xylosoxidans — Przykłady wyglądu stref zahamowania wzrostu dla Achromobacter xylosoxidans przy oznaczaniu wrażliwości na trimetoprim – sulfametoksazol. a-b) Widoczna jest zewnętrzna krawędź strefy zahamowania wzrostu. Należy odczytać wielkość strefy zahamowania wzrostu i dokonać interpretacji zgodnie z wartościami granicznymi. c) Podrost pod krążek oraz brak widocznej krawędzi strefy zahamowania wzrostu. Szczep raportować jako oporny.

Źródło

Wersja
16.0, obowiązuje od 2026-01-01
Rozdział
Achromobacter xylosoxidans (str. 110)
Redakcja
prof. dr hab. n. med. Walerii Hryniewicz, mgr Ewy Gabińskiej i dr n. med. Doroty Żabickiej
Zobacz pełną matrycę lekowrażliwości